Молекулярная биология митохондрий
Используемые методы
-
Методы молекулярного клонирования
получение штаммов-продуцентов бактерий и дрожжей для наработки рекомбинантных белков
-
Выделение и очистка рекомбинантных белков
с помощью жидкостной хроматографии на различных типах сорбентов
-
Модификация геномов клеток высших эукариот
с помощью системы CRISPR/Cas9
-
Модификация геномов дрожжей
с помощью гомологичной рекомбинации
- Выделение высокоочищенных митохондрий из различных объектов
-
Биохимический анализ параметров функциональности митохондрий
измерение скорости поглощения кислорода клетками, анализ активностей комплексов цепи окислительного фосфорилирования, исследование стехиометрического состава суперкомплексов электрон-транспортной цепи
-
Высокопроизводительный анализ митохондриальных функций
с помощью анализатора SeaHorse FX
- Количественная ПЦР в реальном времени
-
Изучение эффективности биосинтеза белка в митохондриях
in vivo и in organello
-
Анализ характера белок-белковых взаимодействий
с помощью ко-иммунопреципитации и других методов
- Дифференциальный протеомный анализ
- Выделение и анализ митохондриальных рибосом
Сотрудники
Студенты 22/23
- Замятнина Ксения Андреевна, аспирант первого года
- Пиунова Ульяна Евгеньевна, аспирант второго года
- Ханнанов Ринат Асхатович, аспирант третьего года
Студенты-дипломники с 2018 года
Васильев Руслан Алексеевич, аспирант 2018-2022, успешно защитил кандидатскую диссертацию «Направленная модификация геномов с помощью новых эндонуклеаз CRISPR/Cas V типа»
Дербикова Ксения Сергеевна, аспирант 2014-2018, успешно защитила кандидатскую диссертацию «Роль белка Aim23p и его концевых удлинений в митохондриальной трансляции у дрожжей»
Красавина Дарья, бакалавриат 2019 – оценка «отлично», магистратура 2021 «Изучение молекулярных механизмов функционирования митохондрий в клетках человека с помощью технологий редактирования генома» – оценка «отлично»
Макаров Алексей, бакалавриат 2019 – «Биологическая роль третьего фактора инициации митохондриальной трансляции млекопитающих», оценка «отлично»
Зинина Валерия, магистратура 2018 — «Роль белка Aim23p в трансляционном аппарате митохондрий дрожжей», оценка «отлично»
Чуденкова Маргарита, бакалавриат 2018 – «Изменения состава суперкомплексов дыхательной цепи митохондрий в опухолевых тканях человека», оценка «отлично»
Мирная Анна, бакалавриат 2018 – «Aim23p как многофункциональный регулятор митохондриальной трансляции у Saccharomyces cerevisiae», оценка «отлично»
Капуста Анастасия, бакалавриат 2018 – «Изучение характера взаимодействия белка Aim23p с рибосомами», оценка «отлично»
Сотрудничество с зарубежными лабораториями
Лаборатория проф. Ивана Тарасова, Университет Страсбурга, Франция
Лаборатория Алексея Амунтса, Университет Стокгольма, Швеция
Лаборатория проф. Константина Ходосевича, Университет Копенгагена, Дания
Проекты нашей научной группы направлены на исследования митохондрий, а именно – на изучение процессов биосинтеза белка в этих органеллах.
Долгое время считалось, что поскольку митохондрии произошли от бактериального предшественника, трансляция в этих органеллах сходна с биосинтезом белка в эубактериях. Однако исследования последних десятилетий показали, что митохондриальная трансляция существенно отличается как от бактериальной, так и от цитоплазматической трансляции эукариот. В первую очередь, эти отличия связывают со специализацией митохондриальных рибосом на синтез высокогидрофобных белков, закодированных в митохондриальном геноме.
Механизмы тонкой регуляции трансляции в митохондриях млекопитающих
Геном митохондрий млекопитающих кодирует 11 мРНК, несущих информацию о первичной структуре 13 белков. Образование этих мРНК, то есть процесс транскрипции, регулируется довольно слабо, следовательно, определяющим количества различных белков процессом является трансляция. Регуляция этого процесса изучена слабо, в частности, регуляторные механизмы выявлены только для двух мРНК – это белки TACO1 и PTCD2 (выявлен нами), определяющие эффективность трансляции мРНК CO1 и Cox3 соответственно.
Для поиска новых белков, участвующих в регуляции митохондриальной трансляции млекопитающих, мы проводим биоинформатический анализ белков – кандидатов.
После этого с помощью технологии редактирования геномов CRISPR/Cas9 вносим делецию в ген белка-кандидата, а затем анализируем клетки полученной линии. Для этого мы проводим анализ эффективности митохондриальной трансляции, анализ митохондриальной функции, а также измерение активностей комплексов цепи окислительного фосфорилирования.
В том случае, если произведенная нами делеция приводит к нарушению митохондриальной трансляции, мы пытаемся выявить механизм работы соответствующего белка, определяя его партнеров протеомными методами.
Механизмы инициации митохондриальной трансляции пекарских дрожжей
Пекарские дрожжи являются очень удобным для изучения митохондрий объектом, поскольку способны выживать даже при полной потере митохондриальной функции.
В митохондриях Saccharomyces cerevisiae мРНК имеют протяженные 5’-нетранслируемые области, являющиеся определяющими для регуляции трансляции. В то же время, остается неясным механизм инициации митотрансляции, поскольку до сих пор неочевидно, как именно происходит позиционирование рибосомы на мРНК и выбор стартового кодона.
В своей работе по этому направлению мы изучаем роль факторов инициации трансляции, эволюционно существенно отдалившихся от своих бактериальных предков.
В частности, нами показано, что отсутствие третьего фактора инициации трансляции в митохондриях дрожжей не приводит к остановке биосинтеза белка, как это происходит у эубактерий. Делеция в соответствующем гене ведет к разбалансировке митотрансляции – некоторые белки синтезируются в большем количестве, чем в клетках дикого типа, а количество других – снижается.
В работе используются как классические методы молекулярной биологии и генетики (манипуляции с геномом дрожжей, оценка эффективности трансляции, toe-print анализ и т.д.), так и современные высокопроизводительные подходы – дифференциальный протеомный анализ, рибосомный профайлинг.
Публикации сотрудников группы
- Sosorev AY, Parashchuk OD, Chicherin IV, Trubitsyn AA, Trukhanov VA, Baleva MV, Piunova UE, Kharlanov OG, Kamenski P, Paraschuk DY. Probing of nucleic acid compaction using low-frequency Raman spectroscopy. Phys Chem Chem Phys. 2024 Jun 26; 26(25): 17467-17475.
- Baleva MV, Piunova U, Chicherin I, Vasilev R, Levitskii S, Kamenski P. Mitochondrial Protein SLIRP Affects Biosynthesis of Cytochrome c Oxidase Subunits in HEK293T Cells. Int J Mol Sci. 2023 Dec 20; 25(1): 93.
- Ast T, Itoh Y, Sadre S, McCoy JG, Namkoong G, Wengrod JC, Chicherin I, Joshi PR, Kamenski P, Suess DLM, Amunts A, Mootha VK. METTL17 is an Fe-S cluster checkpoint for mitochondrial translation. Mol Cell. 2024 Jan
- 18; 84(2): 359-374.e8.
- Baleva MV, Piunova UE, Chicherin IV, Levitskii SA, Kamenski PA. Diversity and Evolution of Mitochondrial Translation Apparatus. Biochemistry (Mosc). 2023 Nov; 88(11): 1832-1843.
- Maria V. Baleva, Ivan Chicherin, Uliana Piunova, Viktor Zgoda, Maxim V. Patrushev, Sergey Levitskii, and Piotr Kamenski. Pentatricopeptide protein ptcd2 regulates coiii translation in mitochondria of the hela cell line. International Journal of Molecular Sciences, 23(22):14241, 2022.
- Ivan V. Chicherin, Sergei A. Levitskii, Maria V. Baleva, Igor A. Krasheninnikov, Maxim V. Patrushev, and Piotr A. Kamenski. Labelling and visualization of mitochondrial genome expression products in baker’s yeast saccharomyces cerevisiae. Journal of visualized experiments : JoVE, 2021
- V. Chicherin, S. V. Dukhalin, R. A. Khannanov, M. V. Baleva, S. A. Levitskii, M. V. Patrushev, P. V. Sergiev, and P. Kamenski. Functional diversity of mitochondrial peptidyl-trna hydrolase ict1 in human cells. Frontiers in Molecular Biosciences, 8:716885, 2021
- Berta Sanz‐Morello, Ulrich Pfisterer, Hansen Nikolaj Winther, Samuel Demharter, Ashish Thakur, Katsunori Fujii, Sergey A. Levitskii, Alexia Montalant, Irina Korshunova, Pradeep PA Mammen, Piotr Kamenski, Satoru Noguchi, Blanca Irene Aldana, Karin Sørig Hougaard, Jean‐François Perrier, and Konstantin Khodosevich. Complex iv subunit isoform cox6a2 protects fast‐spiking interneurons from oxidative stress and supports their function. EMBO Journal, e105759, 2020
- Ivan Laptev, Ekaterina Shvetsova, Sergey Levitskii, Marina Serebryakova, Maria Rubtsova, Victor Zgoda, Alexey Bogdanov, Piotr Kamenski, Petr Sergiev, and Olga Dontsova. Mettl15 interacts with the assembly intermediate of murine mitochondrial small ribosomal subunit to form m4c840 12s rrna residue. Nucleic Acids Research, page gkaa522, 2020
- Ivan Chicherin, Sergey Levitskii, Maria V. Baleva, Igor A. Krasheninnikov, Maxim V. Patrushev, and Piotr Kamenski. Yeast mitochondrial translation initiation factor 3 interacts with pet111p to promote cox2 mRNA translation. International Journal of Molecular Sciences, 21(3414), 2020
- A. Levitskii, M. V. Baleva, I. V. Chicherin, I. A. Krasheninnikov, and P. A. Kamenski. Protein biosynthesis in mitochondria: Past simple, present perfect, future indefinite. Biochemistry (Moscow), 85(3):257–263, 2020
- Chicherin, M. Baleva, S. A. Levitskii, E. B. Dashinimaev, I. A. Krasheninnikov, and P. Kamenski. Initiation factor 3 is dispensable for mitochondrial translation in cultured human cells. Scientific reports, 10(7110), 2020